ВЛИЯНИЕ РЕГУЛЯТОРОВ РОСТА НА ЭФФЕКТИВНОСТЬ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ ЗЕМЛЯНИКИ САДОВОЙ

Впервые разработан протокол микроклонального размножения для садовой земляники сорта Фреска из семян, включающий введение в культуру, размножение и укоренение. Объект исследования - земляника садовая сорта Фреска. Целью исследования послужило изучение влияния регуляторов роста и активированного угля на микроклональное размножение вышеуказанного сорта земляники садовой. Семена стерилизовали 0,1% раствором нитрата серебра, затем промывали раствором хлорида натрия, далее производили трехкратную промывку стерильной дистиллированной водой. Для проращивания семян использовали питательную среду по прописи Мурасиге-Скуга без регуляторов роста (МС⁰ ). Для исследования влияния регуляторов роста на развитие растений использовали питательные среды МС с добавлением 6-бензиламинопурина (МС+0,5 мг/л 6-БАП; МС+1,0 мг/л 6-БАП) и тидиазурона (МС+0,5 мг/л ТДЗ). В качестве контроля использовали МС⁰ . Культуральные сосуды помещали под холодный белый флуоресцентный свет, фотопериод 16/8 ч свет/темнота, температур 23±2°C. Для проращивания семян достаточно использовать питательную среду Мурасиге и Скуга без регуляторов роста. Эффективность стерилизации семян 0,1% раствором нитрата серебра была достаточно высокой и составила 97,5%. Однако, качество коммерческих семян было низким, и мы получили лишь 3,9% жизнеспособных сеянцев. Далее было изучено влияние вышеуказанных концентраций регуляторов роста на регенерационный потенциал сеянцев, с использованием в качестве базальной среды компонентного состава по прописи Мурасиге и Скуга. Показано, что применение тидиазурона приводит к некрозу тканей и полной гибели микрорастений, как при культивировании проростков, так и при пересадке на данную среду целых растений. А 6- бензиламинопурин положительно влияет на эффективность микроразмножения земляники садовой сорта Фреска. В нашем случае 6-бензиламинопурин приводил к увеличению коэффициента размножения и индукции ризогенеза (МС+0,5 мг/л 6-БАП). Следует отметить, что добавление в питательную среду активированного угля стимулировало рост микрорастений, но при этом снижался коэффициент размножения (1,0 мг/л 6-БАП). Образование корневой системы регистрировали у всех клонов, которые помещали на среду Мурасиге и Скуга базальную и с содержанием 6-бензиламинопурина.

1. Карпушина М.В., Винтер М.А. Микроклональное размножение земляники садовой // Научные труды Северо-Кавказского федерального научного центра садоводства, виноградарства, виноделия. – 2021. – № 31. – С. 108-113. DOI: https://doi.org/10.30679/2587-9847-2021-31-108-113.

2. Мацнева О.В., Ташматова Л.В., Хромова Т.М., Шахов В.В. Разработка протокола введения растений земляники в культуру in vitro // Вестник аграрной науки. – 2020. – № 5(86). – С. 45-50. DOI: https://doi.org/10.17238/issn2587-666X.2020.5.45.

3. Ashrafuzzaman M., Faisal S., Yadav D., Khanam D., Raihan F. Micropropagation of Strawberry (Fragaria ananassa) through runner culture // Bangladesh journal of agricultural research. – 2013. – Vol. 38(3). – P. 467-472. DOI: https://doi.org/10.3329/bjar.v38i3.16973.

4. Dwiyani R., Yuswanti H., Nyoman N., Mayadewi A., Fitriani Yu. Runner-tip culture of Strawberry (Fragaria x ananassa Duch.) grown on several shoot-induction medium // International journal of biosciences and biotechnology. – 2020. – Vol. 8(1). – P. 10-18. DOI: https://doi.org/10.24843/IJBB.2020.v08.i01.p02.

5. FAO (2023): Food and Agriculture Organization of the United Nations. – [Electronic source] – URL: https://www.fao.org/faostat/en/#data/QCL/visualize

6. Giampieri F., Alvarez-Suarez J.M., Gasparrini M., Forbes-Hernandes T.Y., Afrin S., Bompadre S., Rubini C., Zizzi A., Astolfi P., Santos-Buelga C., Gonzalez-Paramas A.M., Quiles J.L., Mezzetti B., Battino M. Strawberry consumption alleviates doxorubicin-induced toxicity by suppressing oxidative stress // Food and chemical toxicology. – 2016. – Vol. 94. – P. 128-137. DOI: 10.1016/j.fct.2016.06.003.

7. Gündüz K. Strawberry: Phytochemical composition of strawberry (Fragaria × ananassa) // Nutritional composition of fruit cultivars. – Academic Press, 2016. – P. 733-752. DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-408117-8.00030-1.

8. Jhajhra S., Dashora L.K., Singh J., Bhatnagar P., Kumar A., Arya C.K. In vitro propagation of strawberry (Fragaria × ananassa Duch.) // International journal of current microbiology and applied sciences. – 2018. – Vol. 7(10). – P. 3030-3035. DOI: https://doi.org/10.20546/ijcmas.2018.710.353.

9. Kryukov L.A., Vodolazhsky D.I., Kamenetsky-Goldstein R. Micropropagation of Grapevine and Strawberry from South Russia: Rapid Production and Genetic Uniformity // Agronomy. – 2022. – Vol. 12(2). – 308 p. DOI: https://doi.org/10.3390/agronomy12020308.

10. Li Ch., Wu H., Masisi K., Malunga L.N., Song Yu. Strawberries // Nutritional Composition and Antioxidant Properties of Fruits and Vegetables. – Academic Press, 2020. – P. 423-435. DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-812780-3.00026-X.

11. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture // Physiologia plantarum. – 1962. – Vol. 15. – P. 473-497.

12. Padmanabhan P., Mizran A., Sullivan J.A., Paliyath G. Strawberries // Encyclopedia of food and health. – Oxford: Academic Press, 2016. – P. 193-198. DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-384947-2.00667-X.

13. Subin O.V. Microclonal propagation of strawberry (Fragaria ananassa Duch.) Alina sort in culture in vitro // Biological Systems: theory and innovations. – 2016. – Vol. l (214). – P. 281-288.