Особенности морфогенеза Лавандина (Lavandula × intermedia Emeric ex Loisel.) в культуре in vitro

Лавандин (Lavandula × intermedia Emeric ex Loisel.) – представитель семейства Lamiaceae, является ароматическим ценным многолетним растением, которое очень ценится за получаемое эфирное масло, используемого в парфюмерии, косметике, фармацевтической промышленности. Эти эфиромасличные растения могут быть размножены вегетативно, но низкая укореняемость стеблевых черенков препятствует их масштабному использованию. Применение методов биотехнологии, таких как культура органов и тканей растений, позволяет размножать и сохранять in vitro ценные генотипы. В наших исследованиях представлены результаты изучения морфогенетического потенциала 3 сортов лавандина (ʹРабатʹ, ʹСнежный Барсʹ, ʹТемпʹ) в условиях in vitro. Определен оптимальный способ стерилизации исходных апикальных частей побегов изучаемых сортов (1 мин в 70%-ом этаноле, 12 мин в 1%-ом растворе Thimerosal и 15 мин в растворе «ДезТаб») позволивший получить до 90,2% жизнеспособных эксплантов. Выявлены особенности индукции морфогенеза сортов лавандина на питательной среде МС, дополненной цитокининами (БАП или кинетин) и ауксином НУК и показана высокая способность эксплантов к адвентивному побегообразованию на среде с 1,5 мг/л кинетина и 0,05 мг/л НУК. Установлено, что лавандин ʹРабатʹ обладал более высоким морфогенетическим потенциалом в условиях in vitro по сравнению с сортами Снежный Барс и Темп.

1. Бабанина С.С., Егорова Н.А., Ставцева И.В., Абдурашитов С.Ф. Генетическая стабильность растений лаванды узколистной (Lavandula angustifolia Mill.) при длительном клональном микроразмножении // Российская сельскохозяйственная наука. – 2023. – № 1. – С. 13-19. DOI: 10.31857/S2500262723010039

2. Бутенко Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе: учеб. пособие. – М.: ФГК-ПРЕСС, 1999. – 160 с.

3. Егорова Н.А. Влияние состава питательной среды на микроразмножение лаванды in vitro // Известия Самарского научного центра Российской академии наук. – 2013. – Т. 15. – №. 3-5. – С. 1601-1605

4. Нестеренко П.A. Селекция лавандинов // Труды Государственного ботанического сада: Крымиздат, 1947. – T. 24. – С. 8-22.

5. Основы создания генобанка in vitro видов, сортов и форм декоративных, ароматических и плодовых культур: Коллективная монография / под ред. И.В. Митрофановой. – Симферополь: ИТ «АРИАЛ», 2018. – 260 с.

6. Работягов В.Д., Хохлов Ю.С., Палий А.Е. Морфобиологическая характеристика перспективных форм лавандина (L. × intermedia Emeric ex Loisel.) // Труды Никитского ботанического сада. – 2017. – Т. 123. – С. 83-89.

7. Шуваева Т.П., Бородкина А.П. Повышение продуктивности старовозрастных плантаций лаванды узколистной // Масличные культуры. Научно-технический бюллетень Всероссийского научно-исследовательского института масличных культур. – 2015. – Вып. 4. – С. 164.

8. Andrade L. B., Echeverrigaray S., Fracaro F., Pauletti G. F., Rota L. The effect of growth regulators on shoot propagation and rooting of common lavender (Lavandula vera DC) // Plant Cell Tissue Organ Cult. – 1999. – Vol. 56. – P. 79-83.

9. Bhojwani S.S., Dantu P.K. Plant Tissue Culture: An Introductory Text. – New Delhi, Heidelberg, New York, Dordrecht, London: Springer, 2013. – 309 p.

10. Chambon C., Poupet A., Beck, D., Bettachini B., Touche J. Capasites de morphogenese in vitro de divers clones de lavandes et lavandins: observations preliminares sur la valeur agronomique des vitroplants // Agronomie. – 1992. – Vol. 12. – P. 173-181.

11. Dronne S., Jullien F., Caissard J.-C., Faure O. A simple and efficient method for in vitro shoot regeneration from leaves of lavandin (Lavandula × intermedia Emeric ex Loiseleur // Plant Cell Rep. – 1999. – Vol. 18. – P. 429-433

12. Erland L.A.E., Mahmoud S.S. An efficient method for regeneration of lavandin (Lavandula × intermedia cv. ‘Grosso’) // In Vitro Cellular & Development Biology – Plant. – 2014. – Vol. 50. – P. 646-654.

13. Gonçalves S., Romano A. In vitro culture of lavenders (Lavandula spp.) and the production of secondary metabolites // Biotechnology Advances. – 2013. – Vol. 31. – P. 166- 174.

14. Gubišová M., Čičová I. Multiplication of lavender (L. angustifolia) and lavandin (Lavandula × intermedia) in explant culture // Agriculture (Poľnohospodárstvo). – 2023. – Vol. 69. – P. 1-12. DOI: 10.2478/agri-2023-0001

15. Kara N., Baydar H. Effects of Different Explant Sources on Micropropagation in Lavender (Lavandula sp.) // Journal of Essential Oil Bearing Plants. – 2012. – Vol. 15. – P. 250-255. DOI:10.1080/0972060X.2012.10644043

16. Lis-Balchin M. (ed.) Lavender: The Genus Lavandula. – London: Taylor & Francis, 2002. – 292 p.

17. Mitrofanova I.V., Lesnikova-Sedoshenko N.P., Chelombit S.V., Zhdanova I.V., Ivanova N.N., Mitrofanova O.V. The effect of plant growth regulators on the in vitro regeneration capacity in some horticultural crops and rare endangered plant species // Acta Hortic. – 2022. – Vol. 1339. – P. 181-190. DOI: 10.17660/ActaHortic.2022.1339.24

18. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with Tobacco tissue cultures // Physiol. Plant. – 1962. – Vol.15. – P. 473-497.

19. Panizza M., Tognoni F. Micropropagation of lavandin (Lavandula officinalis Chaix × Lavandula latifolia Villars cv. Grosso) // Bajaj Y.P.S. (ed). Biotechnology in agriculture and forestry, High-tech and micropropagation III. – Berlin: Springer, 1992. – Vol. 19. – P. 295-305.

20. Plant Propagation by Tissue Culture / eds. E.F. George M.A. Hall, G.-J. De Klerk. – Dordrecht, Netherlands: Springer, 2008. – Vol. I. – 501 p.

21. Polivanova O.B., Bedarev V.A. Hyperhydricity in Plant Tissue Culture // Plants. – 2022. – Vol. 11.

22. Rojas-Martínez L., Visser R.G.F., de Klerk G.-J. The hyperhydricity syndrome: waterlogging of plant tissues as a major cause // Propagation of Ornamental Plants. – 2010. – Vol. 10. – P. 169-175.

23. Upson T.M., Andrews S. The genus Lavandula. – Portland, OR: Timber Press, 2004. – 442 p.