Оценка различных способов прививки миниатюрных роз на неукорененные черенки с целью получения штамбовых форм

Проведены исследования по возможности ускорения получения штамбовых саженцев 5 сортов миниатюрных роз. В качестве подвоя были использованы два вида – Rosa canina L. и Rosa  mutiflora Thunb.  в  виде  неукорененных  черенков  трех  различных  длин.  По  результатам  исследований  было выявлено,  что  более  перспективными  для  привойного  компонента  являются  черенки  без предварительного  укоренения.  Их  нарезают  с  вида  Rosa  mutiflora  Thunb.  При  сопоставлении укореняемости данного вида Rosa canina L. у них выявлен высокий процент корнеобразования. Было выявлено, что черенки с наибольшей длиной, составляющей 40 см, показывают наилучшие результаты во всех вариантах исследования. Полученные данные по прививки побегов у всех исследуемых сортов роз,  которые  проводились  на  неукорененные  черенки  вида  Rosa  mutiflora  Thunb.  оказались перспективными. Влияние на процесс сращивания подвоя с привоем оказал в значительной мере способ проведения прививочной операции. Такой способ прививки, как улучшенная копулировка вприклад, во всех  изученных  вариантах  показал  наилучшие  результаты.  Подтверждена  возможность  ускоренного получения штамбовых  саженцев  сортов  роз  из  группы  миниатюрные,  посредством  одновременного укоренения подвоя и сращивания привоя с подвоем в условиях закрытого грунта.

1. Бондорина И.А. Основные принципы повышения декоративных свойств древесных растений методами прививки. – Дисс. … канд. биол. наук. – М., 2000. – 110 с.

2. Васильева О.Ю., Амброс Е.В., Козлова М.В. Адаптивный потенциал подвоя Rosa canina L., полученного in vitro, в условиях Юга Западной Сибири // Сельскохозяйственная биология. – 2022. – Т. 57, № 3. – С. 579-590. DOI: 10.15389/agrobiology.2022.3.579rus

3. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований). – М.: Агропромиздат, 1985. – 351 с.

4. Кръстев М.Т. Прививка как метод размножения и улучшения декоративности древесных растений // Проблемы рекреационных растений. – Чебоксары, 1984. – С. 111-115.

5. Кръстев М.Т., Бондорина И.А., Протас С.А. Биологические основы прививки древесных растений при интродукции. – М.: Товарищество научных изданий КМК, 2014. – 164 с.

6. Михайлов Н.Л. Выращивание штамбовых подвоев для роз. – М.: Б.и., 1958. – 20 с.

7. Окунева И.Б. Особенности вегетативного размножения сортовой сирени. – Дисс. … канд. биол. наук. – М., 1988. – 155 с.

8. Assunção M., Tedesco S., Fevereiro P. Molecular aspects of grafting in woody plants // Annual Plant Reviews Online. – 2021. – Vol. 4(1). – P. 87-126. DOI: 10.1002/9781119312994.apr0751

9. Balfagón D., Terán F., Reis de Oliveira T., Santa-Catarina C., Aurelio Gómez-Cadenas A. Citrus rootstocks modify scion antioxidant system under drought and heat stress combination // Plant Cell Reports. – 2021. – Vol. 41. – P. 593-602. DOI: 10.1007/s00299-021-02744-y

10. Baron D., Amaro A., Pina A., Ferreira G. An overview of grafting re-establishment in woody fruit species // Scientia Horticulturae. – 2019. – Vol. 243. – P. 84-91. DOI: 10.1016/j.scienta.2018.08.012

11. Castellano-Hinojosa A., Meyering B., Nuzzo A., Strauss S., Albrecht U. Effect of plant biostimulants on root and plant health and the rhizosphere microbiome of citrus trees in huanglongbing-endemic conditions // Trees. – 2021. – Vol. 35(5). – P. 15251539. DOI: 10.1007/s00468-021-02133-8

12. Davies F., Fann Y.-S. New propagation practices show promise for field-grown roses // American Nurseryman. – 1983. – Vol. 157(3). – P. 73-77.

13. Li W., Chen S., Liu Y., Wang L., Jiang J., Zhao S., Fang W., Chen F., Guan Z. Long-distance transport RNAs between rootstocks and scions and graft hybridization // Planta. – 2022. – Vol. 255(5). – P. 96. DOI: 10.1007/s00425-022-03863-w

14. Monder M., Niedzielski, M., Wolinski K. Effect of phenological stage and rooting enhancers on physiological parameters in stem cuttings in the process of rhizogenesis of Rosa × alba ‘Maiden’s Blush’ // Agriculture. – 2020. – Vol. 10(11). – P. 1-18. DOI: 10.3390/agriculture10110572

15. Ohkawa K. Cutting grafts as a means to propagate greenhouse roses // Science Horticulture. – 1980. – Vol. 13(2). – P. 91-199.

16. Padró M.D.A., Caboni E., Morin K.A.S., Mercado M.A.M., Olalde-Portugal V. Effect of Bacillus subtilis on antioxidant enzyme activities in tomato grafting // Peer J. – 2021. – Vol. 9. – P. 10984. DOI: 10.7717/peerj.10984

17. Qi W., Zhang C., Wang W., Cao Z., Li S., Li H., Zhu W., Huang Y., Bao M., He Y., Zheng R. Transcriptome analysis of different heat stress responses between self-root grafting line and heterogeneous grafting line in rose // Horticultural Plant Journal. – 2021. – Vol. 7(3). – P. 243-255. DOI: 10.1016/j.hpj.2021.03.004

18. Solgi M., Taghizadeh M., Bagheri H. Response of black mulberry onto white mulberry rootstock to stenting (cutting-grafting) techniques and IBA concentrations // Ornamental Horticulture. – 2022. – Vol. 28(1). – P. 78-84. DOI: 10.1590/2447-536X.V28I1.2413

19. Sun J., Hu R., Lv F., Yang Y., Tang Z., Zheng G., Li J., Tian H., Xu Y., Li. S. Comparative transcriptome analysis reveals stem secondary growth of grafted Rosa rugosa ‘Rosea’ scion and R. multiflora ‘Innermis’ rootstock // Genes. – 2020. – Vol. 11(2). – P. 228. DOI: 10.3390/genes11020228

20. Vahdati K., Sarikhani S., Mohammad Mehdi Arab M.M., Leslie C.A., Dandekar A.M., Aletà N., Bielsa B., Gradziel T.M., Montesinos Á.I., Rubio-Cabetas M.J., Sideli G.M., Serdar U., Akyüz B., Beccaro G.L., Donno D., Rovira M., Ferguson L., Akbari M., Sheikhi A., Adriana F. Sestras A.F., Kafkas S., Paizila A., Roozban M.R., Kaur A., Panta S., Zhang L., Sestras R.E., Mehlenbacher S.A. Advances in rootstock breeding of nut trees: Objectives and strategies // Plants. – 2021. – Vol. 10(11). – P. 2234. DOI: 10.3390/plants10112234

21. Van de Pol РА., Brenkelaar А. Stenting of roses; a method for quick propagation by simultaneously cutting and grafting // Scientia Horticulturae. – 1982. – Vol. 17. – P. 187-196.

22. Yuan H., Tai P., Gustave W., Xue F., Sun L. Grafting as a mitigation strategy to reduce root-to-shoot cadmium translocation in plants of Solanaceae family // Journal of Cleaner Production. – 2021. – Vol. 319. – P. 128708. DOI: 10.1016/j.jclepro.2021.128708

23. Zhang X., Feng Y., Khan K., Ullah N., Li Z., Zaheer S., Zhou R., Zhang Z. Quantitative proteomics-based analysis reveals molecular mechanisms of chilling tolerance in grafted cotton seedlings // Agronomy. – 2022. – Vol. 12(5). – P. 1152. DOI: 10.3390/agronomy12051